Conheça as ementas dos mini-cursos incluídos na programação do
IV Curso de Biociências e Biotecnologia
Microscopia Eletrônica de Varredura: princípios e aplicação.
Responsáveis: Maurilio Soares e Bruna Marcon Monitor: Bruna Hilzendeger Marcon Laboratórios: Plataforma de microscopia e Laboratório de Biologia Celular Ementa: Princípio da microscopia eletrônica de varredura (MEV); funcionamento e aplicações do MEV (modos SE, BSE e EDS); preparo de amostras (fixação, metalização e ponto crítico); prática de preparo de amostras; prática de uso do MEV
Determinação estrutural e quantificação por espectrometria de massas.
Responsáveis: Tatiana Arruda e Paulo Carvalho. Monitores: Stephanie Bath de Morais e Helisa Wippel Laboratório: Laboratório de Proteômica e Engenharia de Proteínas Ementa: O mini-curso abordará os seguintes tópicos: introdução sobre estrutura e propriedades físico-químicas dos aminoácidos; purificação de proteínas recombinantes e ensaios de cross-linking; introdução à espectrometria de massas e identificação de peptídeos; introdução à estrutura de proteínas, determinação estrutural e análise de cross-linking por SIM-XL.
Métodos moleculares aplicados ao diagnóstico de doenças infecciosas.
Responsáveis: Josiane Cardoso e Maria Isabel Stets Monitores/Colaboradores: Dr. Leonardo Foti e Dra. Rita de Cássia Pontello Rampazzo Laboratório: Laboratório de Genômica Funcional Ementa:
- Ementa Teórica: Princípios básicos e novas abordagens de Diagnóstico Molecular e Imunodiagnóstico de doenças infecciosas. Técnicas a serem exploradas: Princípios da PCR em Tempo Real; tecnologia de microfluídica, abordando a técnica de Microrranjo Líquido por LUMINEX e fluxo lateral; desenvolvimento de aptâmeros de DNA através da metodologia SELEX; utilização de antígeno e anticorpos no diagnóstico de doenças infecciosas.
Ementa Prática: Diagnóstico sorológico utilizando dispositivo de fluxo lateral; novas abordagens para o diagnóstico molecular utilizando aptâmeros de DNA e detecção por PCR em Tempo Real, técnicas de detecção de anticorpos (western blot e ELISA) aplicada ao diagnóstico de infecções respiratórias.
Utilização da ferramenta CRISPR/Cas9 para nocaute em parasita.
Responsável: Bruno Accioly Alves Romagnoli Monitores: Bruno Accioly Alves Romagnoli, Mariana Sayuri Ishikawa Fragoso e Patricia Ferreira Domingues Laboratórios: Plataforma de Citometria e Laboratório de Regulação da Expressão Gênica Ementa:
- Ementa: Diferentes abordagens para nocaute gênico (i) introdução ao sistema CRISPR/Cas9: histórico, mecanismos de ação, moléculas envolvidas, controles experimentais, aplicações biotecnológicas, vantagens e desvantagens do sistema, seleção do RNA guia; (ii) Trypanosoma cruzi como modelo experimental: estudo da linhagem celular e da aplicação do sistemaCRISPR/Cas9, técnicas laboratoriais para obtenção de linhagem de transfectantes com mutação no gene GFP, GP72 e α-tubulina (iii) análise do fenótipo obtido por citometria de fluxo e microscopia óptica; (iv) princípios básicos de citometria e interpretação de resultados.
- Atividades práticas: Busca das sequências de RNA guia alvos para GFP, GP72 e α-tubulina; PCR para produção de DNA molde; transcrição in vitro; cultivo de T. cruzi; transfecção e seleção das populações transfectantes; preparo de amostras para citometria de fluxo e microscopia óptica; análise do fenótipo por microscopia óptica (morfologia celular) e citometria de fluxo (viabilidade e ciclo celular).
Células-tronco: da biologia básica a possíveis aplicações.
Responsável: Anny Waloski Robert Laboratórios: Laboratório de Células-tronco Ementa: Ementa: Conceito de células-tronco: o que são, quais são os tipos e onde podem ser obtidas. Pesquisas e aplicações envolvendo células-tronco. Técnicas e noções de cultivo celular (teórico-prático): descongelamento, congelamento, repique e avaliação da diferenciação de células-tronco adultas.
Técnicas em virologia: diagnóstico e antivirais
Responsáveis: Camila Zanluca e Andrea Koishi Monitores: Allan Henrique Depieri Cataneo e Juliana Bernardi Aggio Laboratório: Laboratório de Virologia Molecular Ementa:
- Ementa teórica: Aspectos gerais em virologia com ênfase em flavivírus (especialmente Dengue e Zika vírus): estrutura, infecção, replicação e montagem, resposta imune à infecções virais, patogênese, agentes antivirais e diagnóstico; Princípios básicos de técnicas utilizadas em virologia.
- Atividades práticas: Diagnóstico molecular e sorológico de infecção por flavivírus através de PCR e ELISA, isolamento viral e triagem de compostos antivirais, abordando as técnicas de titulação, citometria de fluxo e imunofluorescência indireta.
Estudo da expressão gênica – do PCR as “ômicas”.
Responsáveis: Mateus Aoki e Daniela Pavoni Laboratório: Laboratório de Genômica Funcional Ementa: Conceitos de abordagens em larga escala, como transcritômica e proteômica, e de abordagens em pequena escala, como PCR, destacando suas potencialidades e aplicações no estudo da expressão gênica.
Aulas teóricas:
- 1. Regulação da expressão gênica; 2. Técnica de PCR e tipos;
- 3. Sequenciamento de DNA e RNA, de Sanger aos sequenciamentos de nova geração;
- 4. Transcritômica e proteômica;
- 5. Análise de dados;
- 6. Discussão de artigo científico.
Atividades práticas:
- 1. Cultura celular como uma ferramenta na pesquisa científica;
- 2. Avaliação da expressão gênica por PCR em tempo real;
- 3. Discussão de resultados.
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