LabTryp

O LabTryp tem o objetivo de integrar e fortalecer as linhas de pesquisa do Instituto Carlos Chagas em parasitologia molecular, com foco em tripanossomatídeos de importância médica, tendo o parasita Trypanosoma cruzi como principal modelo de estudo. Apesar do avanço na compreensão da doença de Chagas em mais de cem anos de pesquisa desde sua descoberta, aspectos centrais da doença ainda não estão elucidados, tais como os fatores que determinam sua evolução clínica e os mecanismos responsáveis pela persistência do parasita no hospedeiro. Além disso, a doença de Chagas ainda é um desafio de saúde pública, em termos de diagnóstico, tratamento e prevenção.

Através de uma abordagem multidisciplinar – com técnicas de biologia molecular e celular, bioquímica e tecnologias ômicas -, o LabTryp se dedica ao estudo de processos biológicos fundamentais do parasita e de sua interação com o hospedeiro, entre os quais se destacam a regulação de sua expressão gênica, tráfego vesicular, glicosilação e sinalização celular e epigenética.

Além da pesquisa básica, o laboratório está iniciando o desenvolvimento de projetos focados na obtenção de novos fármacos e à integração do laboratório com os serviços de vigilância e assistência em saúde do Paraná, incluindo estudos sobre vetores, casos humanos e métodos diagnósticos.

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Linhas de pesquisa

[ultimate_modal icon_type=”custom” icon_img=”id^19412|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha302.jpg|caption^null|alt^null|title^linha302|description^null” modal_title=”Mecanismos de Regulação da Expressão Gênica” modal_on=”image” btn_img=”id^19412|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha302.jpg|caption^null|alt^null|title^linha302|description^null” modal_style=”overlay-slidedown” overlay_bg_opacity=”80″]Os tripanossomatídeos (Trypanosoma cruzi, T. brucei e Leishmania spp., entre outros) regulam sua expressão gênica em etapas pós-transcricionais. Sendo assim, proteínas de ligação a RNA (RBPs – RNA-binding proteins) adquirem uma importância capital em direcionar os mRNAs para diferentes compartimentos, como o de tradução, estocagem ou degradação, dependendo dos parceiros com os quais elas interagem. Nosso grupo estuda RBPs, focando em avaliar os RNAs aos quais elas se ligam, as proteínas parceiras e os fenótipos de mutantes-nulo, visando desvendar seu papel nestes parasitas.

 

Coordenadores: Dra. Daniela Pavoni e Dr. Stenio Fragoso[/ultimate_modal]

Mecanismos de Regulação da Expressão Gênica

[ultimate_modal icon_type=”custom” icon_img=”id^19317|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha2.jpg|caption^null|alt^null|title^linha2|description^null” modal_title=”Sinalização Celular e Epigenética” modal_on=”image” btn_img=”id^19317|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha2.jpg|caption^null|alt^null|title^linha2|description^null” modal_style=”overlay-slidedown” overlay_bg_opacity=”80″]Proteínas representam o principal componente funcional das células, estando envolvidas em praticamente todos os processos biológicos. A função de proteínas não depende apenas da transcrição, sendo finamente regulada por modificações pós-traducionais (PTMs), tais como fosforilação, metilação, acetilação, ubiquitinação, glicosilação e lipidação, as quais controlam sua ativação/desativação, localização subcelular, interações e degradação. Nessa linha investigamos como tripanossomatídeos de importância médica – Trypanosoma cruzi, T. brucei e Leishmania spp. – controlam a expressão gênica, a sinalização celular e a regulação epigenética ao longo da diferenciação, da adaptação ao hospedeiro e da resistência a tratamentos. Para isso, combinamos proteômica quantitativa baseada em espectrometria de massas (e.g. LC-MS/MS) com técnicas de bioquímica, biologia molecular e genética reversa. Nossos eixos integram (i) perfis globais de proteoma para detectar proteínas diferencialmente expressas e vias moduladas; (ii) mapeamento de modificações pós-traducionais (PTMs), com foco em fosforilação e metilação, para decodificar redes de quinases/fosfatases e outras rotas de sinalização; (iii) caracterização de PTMs de histonas para conectar organização da cromatina e plasticidade transcricional a mecanismos epigenéticos e (iv) identificação de parceiros de interação de proteínas e PTM-específicos. A análise computacional inclui quantificação label-free, localização de sítios de PTM, análise de motivos, enriquecimento de vias metabólicas e predição de redes de interação proteína-proteína, integrando dados de proteoma e PTMs. O objetivo final é elucidar circuitos de resposta a dano no DNA, dormência e diferenciação, identificar biomarcadores e priorizar alvos terapêuticos, que possam orientar novas estratégias de combate contra doenças causadas por esses parasitas.

Coordenadora: Dra. Lyris de Godoy[/ultimate_modal]

Sinalização Celular e Epigenética

[ultimate_modal icon_type=”custom” icon_img=”id^19320|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha3.jpg|caption^null|alt^null|title^linha3|description^null” modal_title=”Metabolismo de nucleotídeos-açúcares” modal_on=”image” btn_img=”id^19320|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha3.jpg|caption^null|alt^null|title^linha3|description^null” modal_style=”overlay-slidedown” overlay_bg_opacity=”80″]Em relação ao estudo dos nucleotídeos-açúcares, estamos focados no seu papel na síntese de glicoconjugados, que se constituem em importantes fatores de virulência do parasita. Há, relativamente, poucos dados sobre a síntese de glicoconjugados em tripanossomatídeos, sobretudo em T. cruzi, em comparação com o volume de informações disponíveis sobre a sua estrutura e função. Um dos focos concentra-se na identificação e caracterização de transportadores de nucleotídeos-açúcares (NSTs, de Nucleotide Sugar Transporters), responsáveis pelo transporte intracelular dos nucleotídeos-açúcares do citoplasma para o interior do retículo endoplasmático e/ou complexo de Golgi, onde são utilizados como doadores ativados de açúcares nas reações de glicosilação. Estamos interessados na caraterização funcional dos NTS, por nocaute gênico, com foco na composição dos glicoconjugados dos mutantes e na sua capacidade de diferenciação e infectividade. Além do papel biológico dos NSTs, também estamos interessados no estudo da base molecular de reconhecimento de NSTs e seus substratos. Esta linha de pesquisa foi impulsionada pela resolução das estruturas 3D dos transportadores de GDP-manose (Vrg4) de Saccharomyces cerevisiae e CMP-ácido siálico murino e de milho. O trabalho envolve a caraterização bioquímica dos transportadores purificados em lipossomos e dinâmica molecular.

Além do transporte, estamos investigando a síntese de nucleotídeos-açúcares em T. cruzi, através da caracterização bioquímica das enzimas envolvidas nas vias de síntese destes compostos e do papel biológico de nucleotídeos-açúcares específicos pela supressão de sua síntese. Em T. brucei, o metabolismo dos nucleotídeos-açucares UDP-galactose, UDP-N-acetilglicosamina e GDP-fucose é essencial, e seu estudo foi realizado com o uso de nocaute condicional. Estudos semelhantes poderão ser realizados em T. cruzi pelo nocaute induzido com o sistema de expressão regulado por tetraciclina, desenvolvido no ICC com a participação de nosso grupo, ou com o sistema de nocaute condicional recentemente desenvolvido com o uso de aptazymes autocliváveis – SHARK, de System for Hammerhead Ribozyme-based conditional Knockdown.

Coordenador: Dr. Augusto Ramos[/ultimate_modal]

Metabolismo de
Nucleotídeos-Açúcares

[ultimate_modal icon_type=”custom” icon_img=”id^19327|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha30.jpg|caption^null|alt^null|title^linha30|description^null” modal_title=”Mecanismos Moleculares do Tráfego Vesicular” modal_on=”image” btn_img=”id^19327|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linha30.jpg|caption^null|alt^null|title^linha30|description^null” modal_style=”overlay-slidedown” overlay_bg_opacity=”80″]As células eucarióticas dependem de um sistema de comunicação dinâmico e altamente regulado com o meio externo e entre seus compartimentos internos, através do qual ocorre uma série de processos, tais como a captação de nutrientes, o remodelamento da membrana plasmática e o direcionamento de moléculas através da via secretora. O tráfego interno de proteínas e lipídeos, através de membranas, ocorre continuamente e é altamente seletivo, em relação a carga a ser transportada e ao seu destino. Trypanosoma cruzi apresenta vias endocítica e secretória polarizadas, estando os sítios de endocitose (unicamente na bolsa flagelar e no complexo citóstoma/citofaringe) e exocitose (complexo de Golgi e bolsa flagelar) na região anterior do parasita, enquanto os compartimentos finais da via endocítica (reservossomos) se localizam na região posterior. Embora estas organelas sejam relativamente bem caracterizadas em termos ultraestruturais, pouco se conhece sobre os mecanismos moleculares envolvidos na endocitose e na via secretora em T. cruzi. Além disso, as diferentes formas evolutivas do parasita têm particularidades quanto à sua capacidade endocítica.

Em relação ao transporte vesicular, estamos caracterizando os complexos adaptadores de T. cruzi, que desempenham um papel essencial na seleção das moléculas a serem transportadas e no recrutamento do revestimento proteico e proteínas acessórias para a montagem das vesículas. Dos três tripanossomatídeos de importância médica, T. cruzi é o único que possui quatro (AP-1 a AP-4) dos cinco adaptadores já descritos em eucariotos. Os complexos adaptadores são tetrâmeros, constituídos de duas subunidades maiores, uma de tamanho intermediário e uma menor. O trabalho está sendo desenvolvido pela geração de nocautes de uma das subunidades maiores e análise dos mutantes em relação à localização subcelular de cada complexo, funcionamento da via secretora, capacidade endocítica, diferenciação e infectividade. Nosso grupo já realizou a caracterização funcional do complexo AP-1, tendo-se demonstrado seu envolvimento no endereçamento e processamento de cruzipaína, a principal protease de T. cruzi e um importante fator de virulência do parasita, e na diferenciação e infectividade do parasita. No momento, estamos focados nos complexos AP-2 e AP-4.

 
https://learn.genetics.utah.edu/content/cells/vesicles/

 

Coordenadores: Dr. Augusto Ramos e Dr. Stenio Fragoso

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Mecanismos Moleculares do Tráfego Vesicular

[ultimate_modal icon_type=”custom” icon_img=”id^19420|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/linhasss.jpg|caption^null|alt^null|title^linhasss|description^null” modal_title=”Avaliação de Vetores e Suporte Científico à Vigilância da Doença de Chagas” modal_on=”image” btn_img=”id^19424|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/des2-2.jpg|caption^null|alt^null|title^des2|description^null” modal_style=”overlay-slidedown” overlay_bg_opacity=”80″]O LabTryp tem historicamente se dedicado ao estudo de processos celulares básicos de T. cruzi. Entretanto, reconhecemos a necessidade de aproximar as ações do laboratório às demandas da população e do território. Com esse objetivo, estabelecemos contato com a Secretaria de Estado da Saúde, por meio da Divisão de Doenças Transmitidas por Vetores, para identificar possíveis lacunas relacionadas ao estudo e vigilância da doença de Chagas no Paraná, nas quais pudéssemos atuar de maneira efetiva.

A partir dessa aproximação, estabelecemos a linha de avaliação de vetores e suporte científico à vigilância da doença de Chagas, na qual diferentes possibilidades de colaboração vêm sendo estruturadas, sendo a mais imediata a avaliação da infecção por T. cruzi em insetos vetores coletados no Estado.  O monitoramento sistemático desses triatomíneos permitirá gerar dados essenciais para sensibilizar e apoiar a população médica, especialmente no que se refere à suspeição clínica da doença e à atenção às áreas de risco. Nossa primeira meta dentro dessa nova área de atuação é o desenvolvimento de um método de diagnóstico sensível e específico para a detecção de T. cruzi em triatomíneos. Apesar dos avanços alcançados no diagnóstico do parasita em amostras humanas, o diagnóstico em barbeiros ainda se baseia na análise microscópica do conteúdo intestinal, técnica que apresenta limitações importantes de sensibilidade e requer grande expertise. O desenvolvimento de um método molecular padronizado e de fácil implementação representará um avanço significativo para a vigilância entomológica da doença de Chagas no Paraná e no Brasil.

Coordenadora: Dra. Daniela Pavoni[/ultimate_modal]

Avaliação de Vetores e Suporte Científico à Vigilância da Doença de Chagas

[ultimate_modal icon_type=”custom” icon_img=”id^19425|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/foti.jpg|caption^null|alt^null|title^foti|description^null” modal_title=”Desenvolvimento e validação de insumos para saúde pública” modal_on=”image” btn_img=”id^19425|url^https://prod.icc.fiocruz.br/wp-content/uploads/2026/02/foti.jpg|caption^null|alt^null|title^foti|description^null” modal_style=”overlay-slidedown” overlay_bg_opacity=”80″]A linha clínica será estruturada para suportar estudos de acurácia diagnóstica, desempenho clínico e usabilidade, incluindo desenho prospectivo e avaliação em ambiente relevante ou operacional. Como exemplos de aderência dessa competência, destacam-se estudos de desempenho/usabilidade de testes rápidos em malária e covid19 e as trajetórias de evolução tecnológica dos produtos do grupo, a saber, (i) o biossensor para diagnóstico de câncer de mama, com base pré-clínica (amostras com classificação BIRADS) e encaminhamento para etapas de validação analítica e clínica no nível TRL5, (ii) os procedimentos simplificados de extração de DNA para uso com amostras complexas, já validados clinicamente em laboratório e atualmente em validação clínica no nível TRL5.

Coordenador: Leonardo Foti[/ultimate_modal]

Desenvolvimento e validação de insumos para saúde pública

Publicações

Human cerebral organoids: Complex, versatile, and human-relevant models of neural development and brain diseases.

Coronel, Raquel; González-Sastre, Rosa; Mateos-Martínez, Patricia; Maeso, Laura; Llorente-Beneyto, Elena; Martín-Benito, Sabela; Costa Gagosian, Viviana S.; Foti, Leonardo; González-Caballero, Ma Carmen; López-Alonso, Victoria; Liste, Isabel. Neural Regeneration Research, v. 21, p. 837-854.2026.

 

Histone post-translational modifications of Leishmania braziliensis
Fogaça De Almeida, M. Fernandes, F. Borges Figueiredo, L. Martins, F. De Godoy. Scientific Data 2025 12:1 12, 1899- (2025).

 

Transcription coupled repair occurrence in Trypanosoma cruzi mitochondria
M. Repolês, W. R. Rodrigues Ferreira, A. V. de Assis, I. C. Mendes, F. S. Morini, C. S. Gonçalves, C. M. Costa Catta-Preta, S. O. Kelley, G. R. Franco, A. M. Macedo, J. C. Mottram, M. C. M. Motta, S. P. Fragoso, C. R. Machado. Mitochondrion 83 (2025).

 

From mitochondrial DNA arrangement to repair: a kinetoplast-associated protein with different roles in two trypanosomatid species
S. Gonçalves, C. M. C. Catta-Preta, B. M. Repolês, W. R. R. Ferreira, F. S. Morini, J. C. Mottram, D. P. Cavalcanti, W. de Souza, S. P. Fragoso, C. R. Machado, M. C. M. Motta. Parasites & Vectors 2025 18:1 18, 366- (2025).

 

description of new species from Ecuador (Coleoptera, Staphylinidae, Piestinae).

Caron, E.; McClarin, J.; Buss, B. C.; Foti, L. Zootaxa (Online), v. 5631, p. 548-560.2025

 

Pesticide exposome reveals oxidative stress and immune response disruptions in occupationally exposed women with breast cancer.

De Morais Valentim, Juliana Maria Bitencourt; Pizzatti, Luciana; Coradi, Carolina; Cristina Cazagranda, Isabella; Fadel, Bruna; Vacario, Beatriz Geovana Leite; Gaboardi, Shaiane Carla; Iago Oliveira Coletto, Matheus; Kern, Rodrigo; Pavanelli, Wander Rogério; Rech, Daniel; Dos Santos, Maria Luiza Ferreira; Foti, Leonardo; Cataneo, Allan Henrique Depieri; Silveira, Guilherme Ferreira; Bordignon, Juliano; Seiva, Fábio Rodrigues Ferreira; Panis, Carolina. Scientific Reports, v. 15, p. 30910. 2025.

 

In Vitro Skin Models as Non-Animal Methods for Dermal Drug Development and Safety Assessment

Costa Gagosian, Viviana Stephanie Costa; Coronel, Raquel; Buss, Bruna Caroline; Dos Santos, Maria Luiza Ferreira dos; Liste, Isabel; Anta, Berta; Foti, Leonardo. Pharmaceutics, v. 17, p. 1342, 2025.

 

Prevalence of Mayaro infections in Amazonian peri-urban areas
M. A. Krieger, R. De Cássia Pontello Rampazzo, D. Vieira. J Travel Med 31 (2024).

 

Trypanosoma cruzi interaction with host tissues modulate the composition of large extracellular vesicles
I. V. Rossi, R. F. de Almeida, B. Sabatke, L. M. F. de Godoy, M. I. Ramirez. Scientific Reports 2024 14:1 14, 5000- (2024).

 

DNA lesions that block transcription induce the death of Trypanosoma cruzi via ATR activation, which is dependent on the presence of R-loops
I. C. Mendes, W. dos Reis Bertoldo, A. S. Miranda-Junior, A. V. de Assis, B. M. Repolês, W. R. R. Ferreira, D. F. Chame, D. D. L. Souza, R. S. Pavani, A. M. Macedo, G. R. Franco, E. Serra, V. Perdomo, C. F. M. Menck, G. da Silva Leandro, S. P. Fragoso, M. C. Q. Barbosa Elias, C. R. Machado. DNA Repair (Amst) 141 (2024).

 

Improving in vitro screening compounds anti-Trypanosoma cruzi by GFP-expressing parasites
C. M. M. Delvoss, A. H. Inoue, R. V. da Silva, S. P. Fragoso, I. Eger. Mem Inst Oswaldo Cruz 119 (2024).

 

Detection of avian reovirus (ARV) by ELISA based on recombinant σB, σC and σNS full-length proteins and protein fragments
T. R. A. de Matos, A. Paula Gori Palka, C. de Souza, S. Perdigão Fragoso, D. Parada Pavoni. J Med Microbiol 73 (2024).

 

Evaluation of a Low-Cost and Accessible Approach for Noninvasive Real-Time Blood Oxygen Saturation Measurement Using Video Images
A. De Fatima Galvao Rosa, S. F. Perdigao. IEEE Instrum Meas Mag 27, 30–37 (2024).

Design and development of multiepitope chimeric antigens by bioinformatic and bacterial based recombinant expression methods, with potential application for bovine tuberculosis serodiagnosis

Batista, Cassiano Martin; Veschi, Josir Laine; De Souza, Vanessa Felipe; Foti, Leonardo; Andri, Lea Chapaval. Veterinary Immunology and Immunopathology, v. 1, p. 110729 (2024)

 

Non-histone protein methylation in Trypanosoma cruzi epimastigotes
R. F. de Almeida, A. C. R. Lucena, M. Batista, F. K. Marchini, L. M. F. de Godoy. Proteomics 23, 12(1).

 

A New Strategy for Mapping Epitopes of LACK and PEPCK Proteins of Leishmania amazonensis Specific for Major Histocompatibility Complex I
E. P. Ferreira-Sena, D. de J. Hardoim, F. de O. Cardoso, L. N. d’Escoffier, I. F. Soares, J. P. R. da S. Carvalho, R. A. Angnes, S. P. Fragoso, C. R. Alves, S. G. De-Simone, J. da C. Lima-Junior, A. L. Bertho, T. Zaverucha-do-Valle, F. Souza da Silva, K. da S. Calabrese. Int J Mol Sci 24 (2023).

 

H2B.V demarcates divergent strand-switch regions, some tDNA loci, and genome compartments in Trypanosoma cruzi and affects parasite differentiation and host cell invasion
J. N. Roson, M. De Oliveira Vitarelli, H. M. Costa-Silva, K. S. Pereira, D. Da Silva Pires, L. De Sousa Lopes, B. Cordeiro, A. J. Kraus, K. N. T. CruzI, S. G. Calderano, S. P. Fragoso, T. Nicolai Siegel, M. C. Elias, J. P. C. Da Cunha. PLoS Pathog 18 (2022).

 

Overexpression of TcNTPDase-1 Gene Increases Infectivity in Mice Infected with Trypanosoma cruzi
N. L. da Silva-Gomes, L. A. de S. Ruivo, C. Moreira, M. Meuser-Batista, C. F. da Silva, D. da G. J. Batista, S. Fragoso, G. M. de Oliveira, M. de N. C. Soeiro, O. C. Moreira. Int J Mol Sci 23 (2022).


An induced population of Trypanosoma cruzi epimastigotes more resistant to complement lysis promotes a phenotype with greater differentiation, invasiveness, and release of extracellular vesicles

I. V. Rossi, M. A. F. Nunes, B. Sabatke, H. T. Ribas, S. M. B. Winnischofer, A. S. P. Ramos, J. M. Inal, M. I. Ramirez. Front Cell Infect Microbiol 12 (2022).

 

A disposable and non-contact paper breathalyzer based on small conjugated molecules/carbon nanotubes electrodes
Gusso, Sara Luiza; Prado, Letícia Barros; Ximim Gavim, Anderson Emanuel; Deus, Jeferson Ferreira de; Foti, Leonardo; Mohd Yusoff, Abd. Rashid bin; Da Silva, Wilson José; Rodrigues, Paula Cristina; Macedo, Andreia Gerniski. Physica Status Solidi A – Applications and Materials Science, v. 219, p. 2100808.(2022)

 

Anti-SARS-CoV-2 and anti-cytokine storm neutralizing antibody therapies against COVID-19: Update, challenges, and perspectives.
Batista, Cassiano Martin; Foti, Leonardo. International Immunopharmacology, v. 99, p. 108036. (2022)

 

An updated map of Trypanosoma cruzi histone post-translational modifications
R. F. de Almeida, M. Fernandes, L. M. F. de Godoy. Scientific Data 2021 8:1 8, 93- (2021).

 

DNA Topoisomerase 3α Is Involved in Homologous Recombination Repair and Replication Stress Response in Trypanosoma cruzi.
H. M. Costa-Silva, B. C. Resende, A. C. S. Umaki, W. Prado, M. S. da Silva, S. Virgílio, A. M. Macedo, S. D. J. Pena, E. B. Tahara, L. R. O. Tosi, M. C. Elias, L. O. Andrade, J. L. Reis-Cunha, G. R. Franco, S. P. Fragoso, C. R. Machado. Front Cell Dev Biol 9 (2021).

 

4-Chlorophenylthioacetone-derived thiosemicarbazones as potent antitrypanosomal drug candidates
Rodney Rodrigues de Assis, A. Almeida Oliveira, S. Luiz Porto, R. Aparecida Nonato Rabelo, E. Burgarelli Lages, V. Corrêa Santos, M. Marques Milagre, S. Perdigão Fragoso, M. Martins Teixeira, R. Salgado Ferreira, C. Renato Machado, L. Antônio Miranda Ferreira, N. Lucio Speziali, H. Beraldo, F. Simão Machado. Bioorg Chem 113, 105018 (2021).

 

Identification of novel proteins and mRNAs differentially bound to the Leishmania Poly(A) Binding Proteins reveals a direct association between PABP1, the RNA-binding protein RBP23 and mRNAs encoding ribosomal proteins
L. A. Assis, M. V. C. Santos Filho, J. R. da Cruz Silva, M. J. R. Bezerra, I. R. P. U. C. de Aquino, K. C. Merlo, F. B. Holetz, C. M. Probst, A. M. Rezende, B. Papadopoulou, T. D. C. da Costa Lima, O. P. de Melo Neto. PLoS Negl Trop Dis 15, e0009899 (2021).

 

Assessing the antigenicity of different VP3 regions of infectious bursal disease virus in chickens from South Brazil
A. P. G. Palka, T. R. Assunção de Matos, C. de Souza, D. S. Eugênio, M. A. Krieger, S. P. Fragoso, D. P. Pavoni. BMC Vet Res 17 (2021).

 

A novel receptor for platelet-activating factor and lysophosphatidylcholine in Trypanosoma cruzi
F. S. Coelho, M. M. Oliveira, D. P. Vieira, P. H. M. Torres, I. C. F. Moreira, E. S. Martins-Duarte, I. C. Gonçalves, A. Cabanelas, P. G. Pascutti, S. P. Fragoso, A. H. Lopes. Mol Microbiol 116, 890–908 (2021).

Equipe

Augusto Ramos

Coordenador do laboratório

Formação: graduação em Química (UnB); doutorado em Bioquímica (USP); pós-doutorado (Universidade de Boston) e Universidade de Brasília (UnB)

Linhas de pesquisa: Metabolismo de nucleotídeos-açúcares e Mecanismos Moleculares do Tráfego Vesicular em Trypanosoma cruzi

augusto.ramos@fiocruz.br

Currículo Lattes: 

Daniela Parada Pavoni

Formação: graduação em Biologia (UFSC); doutorado em Biologia Molecular (IOC/Fiocruz)

Linhas de pesquisa: Regulação da expressão gênica de tripanossomatídeos

daniela.pavoni@fiocruz.br

Currículo Lattes: 

Lyris Martins Franco de Godoy

Formação: graduação em Ciências Biológicas (UFPR); mestrado em Biologia Celular e Molecular (UFPR); doutorado em Biologia Celular e Molecular (USP)

Linhas de pesquisa: Modificações pós-traducionais na sinalização celular e controle epigenético em tripanossomatídeos de interesse médico

lyris.godoy@fiocruz.br

Currículo Lattes:

Stenio Perdigão Fragoso

Formação: Possui graduação em Ciências Biológicas pela Universidade de Brasília (1982), mestrado em Ciências Biológicas (Biofísica) pela Universidade Federal do Rio de Janeiro (1986) e doutorado em Ciências Biológicas (Biofísica) pela Universidade Federal do Rio de Janeiro (1993). Atualmente é pesquisador titular da Fundação Oswaldo Cruz, lotado no Instituto Carlos Chagas, Curitiba, Paraná. Tem experiência na área de Bioquímica, com ênfase em Biologia Molecular, atuando principalmente no seguinte tema: regulação da expressão gênica em tripanosomatídeos.

stenio.fragoso@fiocruz.br

Currículo Lattes:

Leonardo Foti

Formação: graduação em Biologia (UFPR); doutorado em Biologia Celular e Molecular (UFPR)

Marise Cristina Schon Lima

Fomação: graduação em Farmácia e Bioquimica (UEPG); mestrado em Ciências Bioquímica (UFPR)

marise.lima@fiocruz.br

Currículo Lattes: http://lattes.cnpq.br/0372922724087874

Flávia Souza Morini

Fomação: graduação em Biologia (PUC-PR); mestrado em Biologia Celular e Molecular (UFPR), doutorado em Biologia Celular e Molecular (UFPR)

flavia.morini@fiocruz.br

Curriculum Lattes : http://lattes.cnpq.br/7878784603877062

Hellen Abreu Pereira

Técnológa de Alimentos (UTFPR)
Mestre em Alimentos e Nutrição (UFPR)
Doutora em Ciências – Bioquímica (UFPR)
Pós-doutora em Genética (UFPR)
habreu@aluno.fiocruz.br

Rafael Fogaça de Almeida

Biólogo (UNOESC), Doutor em Biociências e Biotecnologia (ICC/FIOCRUZ-PR)

rfogaca@aluno.fiocruz.br

http://lattes.cnpq.br/0674356851733994

Luana de Paula Ferreira

Bióloga (UP)

Mestre em Biociências e Biotecnologia (ICC)

luana.ferreira@fiocruz.br

Ema Carolina Almeida Barcellos

Biotecnologista e Mestre em Biociências (Unila)

Aluna de Doutorado do Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular (UFPR)

ebarcellos@aluno.fiocruz.br

Fabricio Henrique de Souza

Bioquímico (UEM), Mestre em Ciências Biológicas (UEM), Doutorando do Programa de Pós-graduação em Biociências e Biotecnologia (ICC/FIOCRUZ-PR)

fhenrique@aluno.fiocruz.br

Maria Luiza Ferreira dos Santos

Bacharela e Licenciada em Ciências Biológicas (UFPR), Mestra e Doutoranda do Programa de Pós-graduação em Biociências e Biotecnologia (ICC/FIOCRUZ-PR)

maria-luiza.santos@fiocruz.br

Viviana S. Costa Gagosian

Bacharela e Licenciada em Ciências Biológicas (UFPR), Mestre em Genética (UFPR) e Doutoranda do Programa de Pós-graduação em Biociências e Biotecnologia (ICC/FIOCRUZ-PR)

viviana.costa@fiocruz.br

Lucas Herrero Matias

Fomação: graduação em Engenharia de Bioprocessos e Biotecnologia (UFPR)

lherreromatias@gmail.com

Currículo Lattes: http://lattes.cnpq.br/8308847688377315

Geovana Insaurriaga Fagundes

Biomédica (UniCesumar)

gfagundes@aluno.fiocruz.br

Luana Maria Mosson Vieira

Biomédica (UTP)

luanamosson@ufpr.br

Bruna Caroline Buss
Apoio de Desenvolvimento Tecnológico

Licenciada em Ciências Biológicas (UFPR), Doutora em Ciências Biológicas – Entomologia (UFPR)

bruna.buss@fiocruz.br

Anna Carolina Huppes de Souza
Apoio de Desenvolvimento Tecnológico

Bacharela em Biomedicina (UEM – Universidade Estadual de Maringá)

anna.huppes@fiocruz.br

Maria Edith Gomes Carvalho da Silva
Apoio de Desenvolvimento Tecnológico

Bacharela em Engenharia Biomédica (INATEL- Instituto Nacional de Telecomunicações)

edith.silva@fiocruz.br

Diniara Munhoz Dias
Apoio de Desenvolvimento Tecnológico

Bacharela em Biomedicina (UEM), Pós-graduação em Gestão da Qualidade (Unicesumar)
diniara.dias@fiocruz.br

Gislaine Dias Lameira

Pesquisa Clínica

Bióloga (Faculdades Integradas Espírita) com MBA em Gestão de Serviços de Saúde Pública.

Coordenação de Estudo Clínico

Especialista em Assuntos Ético-Regulatórios

gislaine.lameira@fiocruz.br

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labtryp.icc@fiocruz.br

Rua Prof. Algacyr Munhoz Mader, 3775
Curitiba/PR, Brasil - CEP 81350‑010